Диагностика по выдыхаемому воздуху: Анализ выдыхаемого воздуха в диагностике сердечно-сосудистых заболеваний | Быкова

Содержание

Анализ выдыхаемого воздуха в диагностике сердечно-сосудистых заболеваний | Быкова

1. Organisation mondiale de la santé. Global status report on noncommunicable diseases 2014: attaining the nine global noncommunicable diseases targets; a shared responsibility. — Geneva: World Health Organization; 298 с. ISBN 978-92-4-156485-4

2. Копылов Ф. Ю., Сыркин А. Л., Чомахидзе П. Ш., Быкова А. А., Шалтаева Ю. Р., Беляков В. В. и др. Перспективы диагностики различных заболеваний по составу выдыхаемого воздуха. Клиническая медицина. 2013;91(10):16–21

3. Amann A, Miekisch W, Schubert J, Buszewski B, Ligor T, Jezierski T et al. Analysis of Exhaled Breath for Disease Detection. Annual Review of Analytical Chemistry. 2014;7(1):455–82. DOI: 10.1146/annurev-anchem-071213-020043

4. Вакс В. Л., Домрачева Е. Г., Собакинская Е. А., Черняева М. Б. Анализ выдыхаемого воздуха: физические методы, приборы и медицинская диагностика. Успехи физических наук. 2014;184(7):739–58. DOI: 10.3367/UFNr. 0184.201407d.0739

5. Карабиненко А. А., Петренко Ю. М., Ильченко Л. Ю., Надеждинский А. И., Понуровский Я. Я., Преснова Е. Д. и др. Феномены, обнаруживаемые методом диодно-лазерной спектрометрии газообразных метаболитов выдыхаемого воздуха человека при его различных функциональных состояниях. Wschodnioeuropejskie Czasopismo Naukowe (East European Scientific Journal). 2018;1-1(29):30–9

6. Золин П. П., Конвай В. Д. Измерение включения изотопной метки в выдыхаемый CO2. Биомедицина. 2017;3:60–70

7. Weitz ZW, Birnbaum AJ, Sobotka PA, Zarling EJ, Skosey JL. High breath pentane concentrations during acute myocardial infarction. Lancet (London, England). 1991;337(8747):933–5. PMID: 1678029

8. Samara MA, Tang WHW, Cikach F, Gul Z, Tranchito L, Paschke KM et al. Single Exhaled Breath Metabolomic Analysis Identifies Unique Breathprint in Patients With Acute Decompensated Heart Failure. Journal of the American College of Cardiology. 2013;61(13):1463–4. DOI: 10.1016/j.jacc.2012. 12.033

9. Pabst F, Miekisch W, Fuchs P, Kischkel S, Schubert JK. Monitoring of oxidative and metabolic stress during cardiac surgery by means of breath biomarkers: an observational study. Journal of Cardiothoracic Surgery. 2007;2(1):37. DOI: 10.1186/1749-8090-2-37

10. Phillips M, Boehmer JP, Cataneo RN, Cheema T, Eisen HJ, Fallon JT et al. Heart allograft rejection: detection with breath alkanes in low levels (the HARDBALL study). The Journal of Heart and Lung Transplantation: The Official Publication of the International Society for Heart Transplantation. 2004;23(6):701–8. PMID: 15366430

11. King J, Kupferthaler A, Unterkofler K, Koc H, Teschl S, Teschl G et al. Isoprene and acetone concentration profiles during exercise on an ergometer. Journal of Breath Research. 2009;3(2):027006. DOI: 10.1088/1752-7155/3/2/027006

12. Karl T, Prazeller P, Mayr D, Jordan A, Rieder J, Fall R et al. Human breath isoprene and its relation to blood cholesterol levels: new measurements and modeling. Journal of Applied Physiology. 2001;91(2):762–70. DOI: 10.1152/jappl.2001.91.2.762

13. Mendis S, Sobotka PA, Euler DE. Expired hydrocarbons in patients with acute myocardial infarction. Free Radical Research. 1995;23(2):117–22. PMID: 7581809

14. McGrath LT, Patrick R, Silke B. Breath isoprene in patients with heart failure. European Journal of Heart Failure. 2001;3(4):423–7. PMID: 11511427

15. Bartelds B, van der Leij FR, Kuipers JR. Role of ketone bodies in perinatal myocardial energy metabolism. Biochemical Society Transactions. 2001;29(Pt 2):325–30. PMID: 11356176

16. Wende AR, Brahma MK, McGinnis GR, Young ME. Metabolic Origins of Heart Failure. JACC: Basic to Translational Science. 2017;2(3):297–310. DOI: 10.1016/j.jacbts.2016.11.009

17. Lommi J, Kupari M, Koskinen P, Näveri H, Leinonen H, Pulkki K et al. Blood ketone bodies in congestive heart failure. Journal of the American College of Cardiology. 1996;28(3):665–72. PMID: 8772754

18. Marcondes-Braga FG, Gutz IGR, Batista GL, Saldiva PHN, AyubFerreira SM, Issa VS et al. Exhaled Acetone as a New Biomarker of Heart Failure Severity. Chest. 2012;142(2):457–66. DOI: 10.1378/chest.11-2892

19. Marcondes-Braga FG, Batista GL, Gutz IGR, Saldiva PHN, Mangini S, Issa VS et al. Impact of Exhaled Breath Acetone in the Prognosis of Patients with Heart Failure with Reduced Ejection Fraction (HFrEF). One Year of Clinical Follow-up. PLOS ONE. 2016;11(12):e0168790. DOI: 10.1371/journal.pone.0168790

20. Yokokawa T, Sato T, Suzuki S, Oikawa M, Yoshihisa A, Kobayashi A et al. Elevated exhaled acetone concentration in stage C heart failure patients with diabetes mellitus. BMC Cardiovascular Disorders. 2017;17(1):280. DOI: 10.1186/s12872-017-0713-0

21. Bykova A. A., Kopylov Ph. Yu., Chomakhidze P. Sh., Malinovskaya L. K., Kuznetsova M. V., Betelin V. B. et al. 6042: Biomarkers of heart failure in exhaled breath. European Heart Journal. 2015;36(suppl 1):1053. [Av. at: https://academic.oup.com/eurheartj/article/36/suppl_1/849/434480. DOI: 10.1093/eurheartj/ehv401

22. Shaltaeva YR, Vasilev VK, Yakovlev DY, Kopylov FI, Syrkin AL, Chomakhidze PS et al. Detection heart failures (HF) biomarkers by proton transfer reaction — mass spectrometry and ion mobility spectrometry. IOP Conference Series: Materials Science and Engineering. 2016;151:012017. DOI: 10.1088/1757-899X/151/1/012017

23. Malinovskaya L. K., Bykova A. A., Chomakhidze P. Sh., Syrkin A. L., Kopylov Ph. Yu., Betelin V. B. et al. P1915. Mass spectrometry for detection heart failure with preserved ejection fraction. European Journal of Heart Failure. 2017;19(Suppl S1):481. [Av. at: https://onlinelibrary.wiley.com/doi/epdf/10.1002/ejhf.833. DOI: 10.1002/ejhf.833

24. Bykova A. A., Malinovkaya L. K., Kopylov Ph. Yu., Chomakhidze P. Sh., Syrkin A. L., Betelin V. B. et al. P568. Exhaled breath analysis in diagnostics of heart failure with preserved ejection fraction. European Journal of Heart Failure. 2016;18(Suppl 1):146. [Av. at: https://onlinelibrary.wiley.com/doi/epdf/10.1002/ejhf.539. DOI: 10.1002/ejhf.539

25. Horváth I, MacNee W, Kelly FJ, Dekhuijzen PN, Phillips M, Döring G et al. “Haemoxygenase-1 induction and exhaled markers of oxidative stress in lung diseases”, summary of the ERS Research Seminar in Budapest, Hungary, September, 1999. The European Respiratory Journal. 2001;18(2):420–30. PMID: 11529303

26. Cheng S, Lyass A, Massaro JM, O’Connor GT, Keaney JF, Vasan RS. Exhaled Carbon Monoxide and Risk of Metabolic Syndrome and Cardiovascular Disease in the Community. Circulation. 2010;122(15):1470–7. DOI: 10.1161/CIRCULATIONAHA.110.941013

27. Tang WHW, Hazen SL. The contributory role of gut microbiota in cardiovascular disease. Journal of Clinical Investigation. 2014;124(10):4204–11. DOI: 10.1172/JCI72331

28. Huang F, Zhang F, Xu D, Zhang Z, Xu F, Tao X et al. Enterococcus faecium WEFA23 from infants lessens high-fat-diet-induced hyperlipidemia via cholesterol 7-alpha-hydroxylase gene by altering the composition of gut microbiota in rats. Journal of Dairy Science. 2018;101(9):7757–67. DOI: 10.3168/jds.2017-13713

29. Bu J, Wang Z. Cross-Talk between Gut Microbiota and Heart via the Routes of Metabolite and Immunity. Gastroenterology Research and Practice. 2018;2018:1–8. DOI: 10.1155/2018/6458094

30. Wang Z, Klipfell E, Bennett BJ, Koeth R, Levison BS, DuGar B et al. Gut flora metabolism of phosphatidylcholine promotes cardiovascular disease. Nature. 2011;472(7341):57–63. DOI: 10.1038/nature09922

31. Zhu W, Gregory JC, Org E, Buffa JA, Gupta N, Wang Z et al. Gut Microbial Metabolite TMAO Enhances Platelet Hyperreactivity and Thrombosis Risk. Cell. 2016;165(1):111–24. DOI: 10.1016/j.cell.2016.02.011

32. Seldin MM, Meng Y, Qi H, Zhu W, Wang Z, Hazen SL et al. Trimethylamine N-Oxide Promotes Vascular Inflammation Through Signaling of Mitogen-Activated Protein Kinase and Nuclear Factor-κB. Journal of the American Heart Association. 2016;5(2):e002767. DOI: 10.1161/JAHA.115.002767

33. Pagonas N, Vautz W, Seifert L, Slodzinski R, Jankowski J, Zidek W et al. Volatile Organic Compounds in Uremia. PLoS ONE. 2012;7(9):e46258. DOI: 10.1371/journal.pone.0046258

Анализ выдыхаемого воздуха в диагностике хронической сердечной недостаточности co сниженной фракцией выброса левого желудочка

Введение

В ряду кардиальных заболеваний выделяют нозологические формы, которые особенно трудно верифицировать при рутинном обследовании пациентов. В частности, диагноз различных форм хронической сердечной недостаточности (ХСН) является итогом комплексного дорогостоящего обследования пациентов. Скрининговое применение лабораторного определения мозгового натрийуретического пептида (МНУП) не всегда доступно. Учитывая неспецифический характер жалоб при ХСН и значительную схожесть клинической картины с другими сердечно-сосудистыми заболеваниями, еще труднее становится выделение группы лиц с наиболее вероятным наличием ХСН среди множества пациентов, предъявляющих жалобы на одышку, снижение переносимости нагрузки, отеки ног.

Известно, что состав выдыхаемого человеком воздуха зависит от метаболизма практически всех систем и органов. При ХСН резко замедляется метаболизм в мышечной ткани, снижается функция почек, печени и легких [1]. В связи с этим предположение о специфическом изменении состава выдыхаемого воздуха у пациентов с ХСН в зависимости от давности и тяжести заболевания представляется обоснованным.

Выдыхаемый воздух представляет собой комплексную матрицу, содержащую не менее 1% летучих органических веществ (ЛОС). На основании анализа спектра ЛОС в выдыхаемом воздухе можно составить представление о состоянии метаболизма. Кроме того, показано, что спектр ЛОС в выдыхаемом воздухе изменяется при ряде заболеваний [2, 3].

Не менее 874 ЛОС можно определить в выдыхаемом воздухе. Около 200 ЛОС достаточно надежно определяются с помощью современной аналитической техники. Не менее 80 ЛОС связаны с курением, и только для нескольких (ацетон, изопрен) из них известны метаболические пути [4].

Выдыхаемый воздух — сложный аналитический объект, включающий неорганические и органические вещества, содержание которых колеблется в широких пределах. Концентрация газов (в том числе в выдыхаемом воздухе) измеряется в ppm (part per million, частица на 1 млн, 10–6), ppb (part per billion, частица на биллион, 10–9), ppt (part per trillion, частица на триллион, 10–12). В настоящее время используют следующие методы анализа [3] — газовая хроматография с масс-спектрометрией, протонная масс-спектрометрия (PTR-MS), протонная масс-спектрометрия с времяпролетным анализатором (PTR-TOF-MS), масс-спектрометрии с выделенными ионными потоками (SIFT-MS) [5], спектрометрия ионной подвижности [2], диодная лазерная спектроскопия поглощения [6—8].

В исследованиях определено лишь несколько веществ в выдыхаемом воздухе, которые, возможно, связаны с патологией сердечно-сосудистой системы. Это пентан, ацетон, монооксид углерода и триметиламиноксид. При этом наибольшее количество работ по выдыхаемому воздуху при ХСН посвящено ацетону. Повышение содержания ацетона в выдохе пациентов с ХСН имеет патофизиологическое обоснование.

Кетоновые тела (ацетон, ацетонуксусная кислота и бета-оксимасляная кислота) являются одним из источников энергии для миокарда: в норме около 7% кислорода, потребляемого левым желудочком, расходуется на окисление кетоновых тел (КТ) [9]. Скорость этого процесса зависит от доступности КТ в крови. Ацетоацетат и β-гидроксибутират метаболизируются сердцем в случаях, когда они синтезируются в печени вследствие повышения доступности жирных кислот (голодание, длительная физическая нагрузка, кетогенная диета, неконтролируемый сахарный диабет 1-го типа, ХСН) [10].

В ряде исследований было отмечено, что при сердечной недостаточности может увеличиваться продукция К.Т. Так, в работе J. Lommi и соавт. [11], включавшей 45 пациентов с ХСН и 14 здоровых добровольцев, уровень кетоновых тел (ацетоацетат и бета-гидроксибутират) был достоверно выше у пациентов с ХСН. Концентрация К.Т. коррелировала с фракцией выброса, давлением в легочной артерии и уровнем норэпинефрина. Считается, что усиление продукции КТ у больных с ХСН вторично симпатической активации. Повышенный уровень норэпинефрина усиливает кетогенез через активацию липолиза в жировой ткани, повышая уровень свободных жирных кислот в крови.

Цель исследования — поиск маркеров, характерных для пациентов с верифицированной ХСН, с помощью анализа выдыхаемого воздуха методом протонной масс-спектрометрии.

Материал и методы

Нами было проведено проспективное клиническое исследование, в которое входили пациенты с ХСН и сниженной ФВ ЛЖ согласно классификации, предложенной Обществом специалистов по сердечной недостаточности (2016), госпитализированные в ГКБ им. С.С. Юдина и Университетскую клиническую больницу № 1 Первого МГМУ им. И.М. Сеченова в период с октября 2014 г. по апрель 2016 г.

Критерии включения: возраст старше 18 лет, наличие симптомов и/или физикальных признаков ХСН, ФВ ЛЖ менее 40%.

Критерии исключения: беременность, онкологические заболевания, острые воспалительные или обострение хронических воспалительных заболеваний, бронхиальная астма, острый коронарный синдром (впервые возникшая стенокардия, нестабильная стенокардия, инфаркт миокарда в течение предыдущего месяца), цирроз печени, печеночная недостаточность, дыхательная недостаточность любой степени (SpO2 <90%), анемия средней и тяжелой степени (гемоглобин менее 90 г/л у женщин и 100 г/л у мужчин), хронический алкоголизм, наркотическая зависимость и психические расстройства. Все подходящие по критериям включения и исключения пациенты ознакомились с информацией об исследовании и дали письменное информированное согласие на участие в нем.

Протокол исследования был одобрен локальным этическим комитетом Первого МГМУ им. И.М. Сеченова (Сеченовский Университет) Минздрава России.

Всего были включены 42 пациента с ХСН со сниженной ФВ ЛЖ и 24 пациента с другими сердечно-сосудистыми заболеваниями в контрольную группу. У пациентов проводился забор выдыхаемого воздуха в мешки Tedlar емкостью 1 л. Пациенты были проинструктированы воздерживаться от принятия пищи, питья, курения и приема препаратов за 12 ч до процедуры, чтобы уменьшить влияние этих факторов на концентрацию ЛОС в выдыхаемом воздухе. Непосредственно перед забором воздуха пациентам было предложено тщательно прополоскать рот водой. Далее в течение 1 сут анализ выдыхаемого воздуха выполняли с помощью протонного масс-спектрометра (Сompact PTR-MS, «Ionicon», Австрия).

Учитывая пилотный характер работы, была выбрана методика анализа не отдельных каналов, а спектра всех значений m/z (отношения массы к заряду) подряд в определенном диапазоне. Диапазон исследуемого спектра значений m/z составлял 21—141, исключая каналы 21, 30, 32 и 37-й, которые соответствуют концентрациям ионов, генерируемых в дрейфовой камере.

Статистический анализ результатов проводился с использованием программного обеспечения SPSS Statistics 23.0. Для оценки нормальности распределения данных был проведен тест Колмогорова—Смирнова. Для переменных с нормальным распределением данные представлены как среднее и стандартное отклонение, для переменных с непараметрическим распределением — в виде медианы с указанием интерквартильного интервала (значения 25-го и 75-го процентилей указаны в скобках). Основные характеристики групп сравнивались с использованием критерия χ2 и точного критерия Фишера для порядковых переменных, U-критерия Манна—Уитни и критерия Краскела—Уоллиса для независимых выборок для непрерывных переменных с распределением, отличным от нормального. Корреляционные связи устанавливали в расчете коэффициента корреляции по Пирсону. Характеристические ROC-кривые построены в статистической программе SPSS. Различия считались достоверными при p<0,05.

Результаты

Демографические и клинические характеристики пациентов с ХСН и группы контроля представлены в табл. 1. Таблица 1. Демографические и клинические характеристики пациентов Примечание. САД — систолическое артериальное давление, СКФ — скорость клубочковой фильтрации, ЛПНП — липопротеины низкой плотности, КДР — конечный диастолический размер, БРА — блокаторы рецепторов ангиотензина.

Большая часть больных в группе ХСН была мужского пола (90,5% против 59,3%). Средний возраст и основные сопутствующие заболевания достоверно не различались между группами, кроме перенесенного инфаркта миокарда, чаще встречавшегося в группе пациентов с ХСН (p=0,021). Выявлены достоверные различия между группами в уровне общего холестерина и ЛПНП, билирубина и N-концевого МНУП. У пациентов с ХСН ФВ ЛЖ была достоверно ниже по сравнению с группой контроля (44% против 61%; р<0,0001). Также достоверные различия между группами касались применения различных групп лекарственных средств (β-блокаторы, дигоксин, петлевые диуретики, антагонисты минералокортикоидных рецепторов, антикоагулянты и антиагреганты достоверно чаще использовались среди пациентов с ХСН).

Всем пациентам выполнен анализ выдыхаемого воздуха на протонном масс-спектрометре. Усредненные спектрограммы выдыхаемого воздуха пациентов с ХСН и группы контроля представлены на рис. 1. Рис. 1. Усредненные спектрограммы выдыхаемого воздуха пациентов с ХСН и группы контроля.

После анализа данных выявлены различия по 36 параметрам выдыхаемого воздуха между пациентами с ХСН и группой контроля (табл. 2). Таблица 2. Результаты анализа выдыхаемого воздуха у пациентов с ХСН и в контрольной группе

Как видно из табл. 2, большая часть веществ определялась в следовых концентрациях (23 вещества с концентрацией менее 1·10–9). Все 5 веществ, выявлявшиеся в значительной концентрации (более 100·10–9), различались между группами с высокой достоверностью.

Учитывая то, что только для ацетона известен механизм образования при ХСН, дальнейший анализ проводился только для этого вещества. При анализе корреляционных связей выявлены достоверные корреляции умеренной силы выдыхаемого ацетона с NT-концевым мозговым натрийуретическим пропептидом, мочевиной, мочевой кислотой и общим билирубином в крови и отдельными эхокардиографическими показателями (ФВ, СДЛА и размер левого предсердия) (табл. 3). Таблица 3. Корреляционные связи ацетона выдыхаемого воздуха с лабораторными и инструментальными показателями

Также было проанализировано содержание ацетона у пациентов с различным ФК ХСН. Выявлены достоверные различия в содержании ацетона в выдыхаемом воздухе между пациентами 2 и 4 ФК по NYHA (рис. 2). Рис. 2. Содержание ацетона в выдыхаемом воздухе у пациентов с ХСН со сниженной ФВ ЛЖ в зависимости от функционального класса.

Для оценки диагностической значимости ацетона в выдыхаемом воздухе как маркера ХСН проведен ROC-анализ. Получено высокое значение AUC (площадь под ROC-кривой) — 0,811 (95% ДИ 0,707—0,915; р<0,0001), что соответствует очень хорошему качеству диагностического теста. Аналогичный показатель для NТ-концевого мозгового натрийуретического пропептида составляет 0,894 (95% ДИ 0,797—0,99; р=0,001).

Учитывая известную взаимосвязь выдыхаемого ацетона с декомпенсацией сахарного диабета, проанализирована корреляционная связь между ацетоном в выдыхаемом воздухе и глюкозой плазмы крови (рис. 3), Рис. 3. Корреляционная связь ацетона в выдыхаемом воздухе с глюкозой плазмы крови. а также наличием или отсутствием диагноза сахарного диабета (r =–0,216; p=0,097). Значимых взаимосвязей не выявлено.

Обсуждение

Поиск новых скрининговых маркеров ХСН представляет несомненную практическую значимость для современного здравоохранения. На настоящий момент диагностический алгоритм для ХСН со сниженной ФВ ЛЖ включает физикальный осмотр, а также комплекс инструментальных и лабораторных тестов. Помимо временных затрат, для выполнения этого алгоритма необходимо наличие диагностической аппаратуры и соответствующих специалистов.

В ряде случаев (амбулаторное звено, приемное отделение стационара) для быстрого принятия решения (дифференциальный диагноз одышки) требуется скрининговый метод, позволяющий быстро исключить ХСН как причину одышки. В настоящее время таким методом является определение МНУП или его NT-концевого предшественника в крови. Метод имеет ряд ограничений. Во-первых, это инвазивная методика (требуется забор крови), во-вторых, не каждое учреждение имеет возможность выполнения экспресс-теста, и, в-третьих, на пороговые значения МНУП влияют возраст, функция почек, индекс массы тела, наличие фибрилляции предсердий [12].

Анализ выдыхаемого воздуха имеет ряд преимуществ: процедура неинвазивна (требуется подышать в маску воздухозаборника), анализ пробы воздуха занимает около 20 мин, при разработке программного обеспечения возможно получение автоматического анализа результатов исследования.

В нескольких исследованиях последних лет было показано, что ацетон выдыхаемого воздуха является диагностическим маркером ХСН [13, 14]. В одном исследовании показано также влияние этого маркера на прогноз заболевания [15].

Учитывая то, что продукция кетоновых тел печенью является неспецифической реакцией на избыток жирных кислот, можно предположить, что повышение содержания ацетона в выдыхаемом воздухе может возникнуть еще при ряде состояний, в первую очередь при декомпенсации сахарного диабета. В настоящее время есть всего несколько публикаций (включая нашу работу) об уровне ацетона у больных с ХСН и сахарным диабетом. Все подобные работы продемонстрировали отсутствие влияния сахарного диабета на уровень ацетона у больных с ХСН. Общим ограничением этих работ является отсутствие среди участников исследования пациентов с декомпенсацией С.Д. Тем не менее корреляции между уровнем глюкозы, гликозилированного гемоглобина и ацетоном в выдыхаемом воздухе обнаружено не было.

Следует обратить внимание на то, что повышение ацетона в выдыхаемом воздухе у пациентов с ХСН может быть обусловлено не только усилением продукции кетоновых тел печенью в ответ на активацию симпатической нервной системы (и соответственно активацию липолиза в жировой ткани). Не последнюю роль в увеличении концентрации ацетона в выдыхаемом воздухе может играть повышение проницаемости легочных капилляров при ХСН. Это косвенно подтверждает различие в концентрации ацетона в выдыхаемом воздухе у пациентов с различными функциональными классами сердечной недостаточности. Так, содержание ацетона в выдыхаемом воздухе больного с IV ФК ХСН достоверно выше, чем у пациента с II ФК. В литературе также есть указания на подобную взаимосвязь. Так, в работе T. Yokokawa и соавт. [16] показано, что уровень ацетона в выдыхаемом воздухе у пациентов с декомпенсацией ХСН достоверно выше, чем у стабильных больных. В другой работе [17] этих же авторов выявлена достоверная корреляция между уровнем выдыхаемого ацетона и давлением заклинивания легочной артерии.

Также необходимо отметить, что в нашей работе выдох пациентов с ХСН отличался от выдоха пациентов из контрольной группы по 36 параметрам. Таким образом, вероятно, речь идет не об анализе вероятности наличия болезни по одному параметру (ацетон), а о создании матрицы (паттерна) изменений, характерных для данной категории больных.

В заключение, анализ выдыхаемого воздуха является новым перспективным методом исследования у пациентов с ХСН, позволяющим неинвазивно, в режиме реального времени оценить вероятность наличия заболевания у больного с одышкой.

К ограничениям исследования необходимо отнести небольшую выборку пациентов, достоверно большее количество мужчин в группе ХСН по сравнению с контролем, что, хотя и является характерной особенностью подобных исследований (ХСН со сниженной ФВ ЛЖ), но затрудняет оценку влияния пола на состав выдыхаемого воздуха. Также следует отметить, что в контрольную группу входили не здоровые добровольцы, а пациенты с другими сердечно-сосудистыми заболеваниями (но не с ХСН). Необходимо отметить, что данное ограничение является общим для всех подобных работ.

До широкого внедрения метода в практику необходимы дальнейшие исследования, направленные на оценку выявленных маркеров ХСН в выдыхаемом воздухе в зависимости от типа ХСН (с сохранной и промежуточной ФВ ЛЖ), стадии заболевания, динамики маркеров в течение болезни и возможность раннего выявления застоя у пациентов с ХСН.

Публикация выполнена в рамках государственного задания ФГУ ФНЦ «НИИСИ» РАН (проведение фундаментальных научных исследований) по теме № 0065−2019−0017 «Применение метода протонной масс-спектрометрии выдыхаемого воздуха в диагностике сердечно-сосудистых заболеваний» (№АААА-А19−119011590099−5).

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

The authors declare no conflict of interest.

Сведения об авторах

Быкова А.А. — https://orcid.org/0000-0002-2035-2340; e-mail: [email protected]

Малиновская Л. К. — https://orcid.org/0000-0003-3882-6564

Трушина О.В. — https://orcid.org/0000-0002-9101-180X

Чомахидзе П.Ш. — https://orcid.org/0000-0002-2035-2340

Шалтаева Ю.Р. — https://orcid.org/0000-0002-9856-6031

Прошляков А.Ю. — https://orcid.org/0000-0003-3938-3822

Сердитенко Е.В. — https://orcid.org/0000-0002-4275-1035

Сыркин А.Л. — https://orcid.org/0000-0002-6452-1222

Бетелин В.Б. — https://orcid.org/0000-0001-6646-2660

Копылов Ф.Ю. — https://orcid.org/0000-0001-5124-6383

Автор, ответственный за переписку: Быкова А.А. — e-mail: [email protected]

Быкова А.А., Малиновская Л.К., Трушина О.В., Чомахидзе П.Ш., Шалтаева Ю.Р., Прошляков А.Ю., Сердитенко Е.В., Сыркин А.Л., Бетелин В.Б., Копылов Ф.Ю. Анализ выдыхаемого воздуха в диагностике хронической сердечной недостаточности co сниженной фракцией выброса левого желудочка. Кардиология и сердечнососудистая хирургия. 2019;12(6):568-576. https://doi.org/10.17116/kardio201912061

Диагностика заболеваний легких на основе протеомного анализа конденсата выдыхаемого воздуха | Анаев

1. Konstantinidi E.M., Lappas A.S., Tzortzi A.S., Behrakis P.K. Exhaled Breath Condensate: Technical and Diagnostic Aspects. Scientific World Journal. 2015; 2015: 435160. DOI: 10.1155/2015/435160.

2. Borrill Z.L., Roy K., Singh D. Exhaled breath condensate biomarkers in COPD. Eur. Respir. J. 2008; 32 (2): 472–486. DOI: 10.1183/09031936.00116107.

3. Bloemen K., Hooyberghs J., Desager K. et al. Non-invasive biomarker sampling and analysis of the exhaled breath proteome. Proteomics Clin. Appl. 2009; 3 (4): 498–504. DOI: 10.1002/prca.200800095.

4. Lin J.L., Bonnichsen M.H., Nogeh E.U. et al. Proteomics in detection and monitoring of asthma and smoking-related lung diseases. Exp. Rev. Proteomics. 2010; 7 (3): 361–372. DOI: 10.1586/epr.10.9.

5. Lim M.Y., Thomas P.S. Biomarkers in exhaled breath condensate and serum of chronic obstructive pulmonary disease and non-small-cell lung cancer. Int. J. Chronic Dis. 2013; 2013: 578613. DOI: 10.1155/2013/578613.

6. Nobakht M. Gh B.F., Aliannejad R., Rezaei-Tavirani M. et al. The metabolomics of airway diseases, including COPD, asthma and cystic fibrosis. Biomarkers. 2015; 20 (1): 5–16. DOI: 10.3109/1354750X.2014.983167.

7. Terracciano R., Pelaia G., Preiano M., Savino R. Asthma and COPD proteomics: current approaches and future directions. Proteomics Clin. Appl. 2015; 9 (1–2): 203–220. DOI: 10.1002/prca.201400099.

8. Czitrovszky A., Szymanski W., Nagy A., Jani P. A new method for the simultaneous measurement of particle size, complex refractive index and particle density. Meas Sci. Technol. 2002; 13: 303–308.

9. Horvath I., Lazar Z., Gyulai N. et al. Exhaled biomarkers in lung cancer. Eur. Respir. J. 2009; 34 (1): 261–275. DOI: 10.1183/09031936.00142508.

10. Lee Y.T., Chen S.C., Shyu L.Y. et al. Significant elevation of plasma cathepsin B and cystatin C in patients with community-acquired pneumonia. Clin. Chim. Acta. 2012; 413 (5–6): 630–635. DOI: 10.1016/j.cca.2011.12.010.

11. Buszewski B., Kesy M., Ligor T., Amann A. Human exhaled air analytics: biomarkers of diseases. Biomed Chromatogr. 2007; 21 (6): 553–566.

12. Conrad D.H., Goyette J., Thomas P.S. Proteomics as a method for early detection of cancer: a review of proteomics, exhaled breath condensate, and lung cancer screening. J. Gen. Intern. Med. 2008; 23 (Suppl. 1): 78–84. DOI: 10.1007/s11606-007-0411-1.

13. Horvath I., Hunt J., Barnes P.J. Exhaled breath condensate: methodological recommendations and unresolved questions. Eur. Respir. J. 2005; 26 (3): 523–548.

14. Глобальная стратегия диагностики, лечения и профилактики хронической обструктивной болезни легких. Пересмотр 2014 года. Доступно на: http://goldcopd.org/wp-content/uploads/2016/04/GOLD-Report-Russian2014.pdf

15. Чучалин А.Г., Синопальников А.И., Козлов Р.С. и др. Российское респираторное общество (РРО). Межрегиональная ассоциация по клинической микробиологии и антимикробной химиотерапии (МАКМАХ). Клинические рекомендации по диагностике, лечению и профилактике тяжелой внебольничной пневмонии у взрослых. Пульмонология. 2014; (4): 13–48.

16. Бычков М.Б., Горбунова В.А. Ассоциация онкологов России. Клинические рекомендации по диагностике и лечению больных раком легкого. М.; 2014. Доступно на: http://oncology-association.ru/docs/recomend/may2015/19vz-rek.pdf

17. Kurova V., Anaev E., Kononikhin A. et al. Proteomics of exhaled breath: methodological nuances and pitfalls. Clin. Chem. Lab. Med. 2009; 47 (6): 706–712. DOI: 10.1515/CCLM.2009.166.

18. Ishihama Y., Rappsilber J., Andersen J.S., Mann M. Microcolumns with self-assembled particle frits for proteomics. J. Chromatogr. A. 2002; 979 (1–2): 233–239.

19. Nesvizhskii A., Keller A., Kolker E., Aebersold R. A statistical model for identifying proteins by tandem mass spectrometry. Anal. Chem. 2003; 75 (17): 4646–4658.

20. Hoffmann H., Tabaksblat L., Enghild J., Dahl R. Human skin keratins are the major proteins in exhaled breath condensate. Eur. Respir. J. 2008; 31 (2): 380–384. DOI: 10.1183/09031936.00059707.

21. Schittek B., Hipfel R., Sauer B. et al. Dermcidin: a novel human antibiotic peptide secreted by sweat glands. Nat. Immunol. 2001; 2 (12): 1133–1137.

22. Ghosh R., Maji U.K., Bhattacharya R., Sinha A.K. The role of dermcidin isoform 2: a two-faceted atherosclerotic risk factor for coronary artery disease and the effect of acetyl salicylic acid on it. Thrombosis. 2012; 2012: 987932. DOI: 10.1155/2012/987932.

23. Lee Motoyama J.P., Kim-Motoyama H., Kim P. et al. Identification of dermcidin in human gestational tissue and characterization of its proteolytic activity. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2007; 35 7(4): 828–833.

24. Cunningham T.J., Hodge L., Speicher D. et al. Identification of a survival-promoting peptide in medium conditioned by oxidatively stressed cell lines of nervous system origin. J. Neurosci. 1998; 18: 7047–7060.

25. Stewart G.D., Skipworth R.J., Pennington C.J. et al. Variation in dermcidin expression in a range of primary human tumours and in hypoxic/oxidatively stressed human cell lines. Br. J. Cancer. 2008; 99 (1): 126–132. DOI: 10.1038/sj.bjc.6604458.

26. Yano C.L., Ventrucci G., Field W.N. et al. Metabolic and morphological alterations induced by proteolysis-inducing factor from Walker tumour-bearing rats in C2C12 myotubes. BMC Cancer. 2008; 8: 24. DOI: 10.1186/1471-2407-8-24.

27. Urade Y., Hayaishi O. Prostaglandin D synthase: Structure and function. Vitam. Horm. 2000; 58: 89–120.

28. Mizon C., Piva F., Queyrel V. et al. Urinary bikunin determination provides insight into proteinase / proteinase inhibitor imbalance in patients with inflammatory diseases. Clin. Chem. Lab. Med. 2002; 40 (6): 579–586.

29. Leclerc E.A., Gazeilles L., Serre G. et al. The ubiquitous dermokine delta activates Rab5 function in the early endocytic pathway. PLoS One. 2011; 6 (3): e17816. DOI: 10.1371/journal.pone.0017816.

30. Hasegawa M., Higashi K. , Yokoyama C. et al. Altered expression of dermokine in skin disorders. J. Eur. Acad. Dermatol. Venereol. 2013; 27 (7): 867–875. DOI: 10.1111/j.1468-3083.2012.04598.x.

31. Kinnula V.L., Vuorinen K., Ilumets H. et al. Thiol proteins, redox modulation and parenchymal lung disease. Curr. Med. Chem. 2007; 14 (2): 213–222.

32. Poschmann G., Sitek B., Sipos B. et al. Identification of proteomic differences between squamous cell carcinoma of the lung and bronchial epithelium. Mol. Cell Proteomics. 2009; 8 (5): 1105–1116. DOI: 10.1074/mcp.M800422MCP200.

33. Spik I., Brenuchon C., Angeli V. et al. Activation of the prostaglandin D2 receptor DP2/CRTh3 increases allergic inflammation in mouse. J. Immunol. 2005; 174 (6): 3703–3708.

34. Wei N., Deng X.W. The COP9 signalosome. Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 2003; 19: 261–286. DOI:10.1146/annurev.cellbio.19.111301.112449.

35. Wang Q., Li X., Ren S. et al. Serum levels of the cancertestis antigen POTEE and its clinical significance in nonsmall-cell lung cancer. PLoS One. 2015; 10 (4): e0122792. DOI: 10.1371/journal.pone.0122792.

36. Wood L., Maher J., Bunton T., Resar L. The oncogenic properties of the HMG-I gene family. Cancer Res. 2000; 60 (15): 4256–4261.

37. Resar L. The high mobility group A1 gene: transforming inflammatory signals into cancer? Cancer Res. 2010; 70 (2): 436–439. DOI: 10.1158/0008-5472.CAN-09-1212.

38. Walmer D., Padin C., Wrona M. et al. Malignant transformation of the human endometrium is associated with overexpression of lactoferrin messenger RNA and protein. Cancer Res. 1995; 55: 1168–1175.

39. Ziolkowski P., Wozniak M., Dus K., Wisniewski J. The NUCKS: A novel tumor biomarker. J. Mol. Biomark. Diagn. 2013; 4 (145): 1000145.

Диагностика дыхания

У ВАС ЕСТЬ АПНОЭ ВО СНЕ?

90% ЛЮДЕЙ, СТРАДАЮЩИХ АПНОЭ СНА, НЕ ДИАГНОЗИРОВАНЫ. ТЫ ОДИН ИЗ НИХ?

УЗНАТЬ +

ПРИНЯТА СТРАХОВКА

Мы принимаем основные медицинские страховки PPO. Позвоните нам для бесплатной проверки страховки.

ПОЗВОНИТЕ НАМ +

Как ты спишь?

Пройдите нашу экспресс-оценку сна и узнайте.

* Получение этой оценки не означает, что вы спите расстройство. Это просто руководство по повышению осведомленности.

ПОЛУЧИТЕ ОЦЕНКУ СНА +

ЧАСЫ РАБОТЫ

ЧАСЫ РАБОТЫ

Понедельник 9:00–18:00

Вторник 9:00–18:00

Среда 9:00–18:00

Четверг 9:00–18:00

Пятница 9:00–18:00

ЛАБОРАТОРНЫЕ ЧАСЫ

Ежедневно 20:00–6:00

РАБОЧИЕ ЧАСЫ

Понедельник 9:00–18:00

Вторник 9:00 – 18:00

Среда 9:00–18:00

Четверг 9:00–18:00

Пятница 9:00–18:00

ЛАБОРАТОРНЫЕ ЧАСЫ

Ежедневно с 8:00 до 18:00

Наши местоположения

Шерман Оукс, CA

4515 Van Nuys Blvd #202
Sherman Oaks, CA 91403
(888) 538-4663 9004

9003
(888).

4214 Green River Rd, Ste 100
Corona, CA 92880
(888) 538-4663

ТУР КОРОНА

Торранс, Калифорния

23332 Hawthorne Blvd, Ste 201
Торранс, Калифорния
(888) 538-4663

ТУР ТОРРАНС

ПРЕДЛАГАЕТ ШИРОКИЙ СПЕКТР

УСЛУГ, СВЯЗАННЫХ С РАССТРОЙСТВАМИ СНА

Наша респираторная группа предлагает высококачественные, экономически эффективные услуги и клинический опыт
пациентам, страдающим от проблем со сном. Наши инновационные лабораторные услуги улучшают здоровье сна.

Наша бригада пульмонологов предлагает высококачественные, экономичные услуги и клинический опыт пациентам, страдающим от проблем со сном. Наши инновационные лабораторные услуги улучшают здоровье сна.

ИССЛЕДОВАНИЯ СНА

Тест сна — это комплексное диагностическое исследование сна, проводимое для исключения апноэ во сне и других нарушений сна. Мы можем планировать исследования сна в один и тот же день 7 дней в неделю.

ДОМАШНЕЕ ИССЛЕДОВАНИЕ ЭЭГ

Мы можем предоставить как стандартные, так и расширенные амбулаторные видео-ЭЭГ исследования (до 96 часов), не выходя из дома. Все исследования можно провести в тот же день в любой точке Южной Калифорнии.

ИССЛЕДОВАНИЯ СНА

Тест сна — это комплексное диагностическое исследование сна, проводимое для исключения апноэ во сне и других нарушений сна. Мы можем планировать исследования сна в один и тот же день 7 дней в неделю.

ДОМАШНЕЕ ИССЛЕДОВАНИЕ ЭЭГ

Мы можем предоставить как стандартные, так и расширенные амбулаторные видео-ЭЭГ исследования (до 96 часов), не выходя из дома. Все исследования можно провести в тот же день в любой точке Южной Калифорнии.

Мы занимаем лидирующие позиции в исследованиях сна и услугах ЭЭГ , предоставляя расширенное тестирование и поддержку для широкого спектра потребностей, включая все виды нарушений сна и неврологические состояния.

НАША МИССИЯ

Наша миссия проста. Мы здесь, чтобы служить вам.

Мы посвящаем наши дни тому, чтобы переломить ситуацию с серьезными нарушениями сна, прерывающими жизнь, и расширить границы науки, чтобы изменить вашу жизнь.

  • Мы верим, что нужно находить время, чтобы внимательно выслушать наших пациентов.
  • Мы заботимся о наших пациентах.
  • Мы придерживаемся самых высоких стандартов профессионального поведения.
  • Мы стремимся постоянно обновлять наши знания о последних достижениях в области медицины сна, чтобы открывать новые и лучшие способы обслуживания наших пациентов.
  • Мы верим в создание альянсов с нашими пациентами и их семьями для обеспечения наилучшего ухода.

КАК СПОН?

Пройдите нашу экспресс-оценку сна и узнайте.

* Прохождение этой оценки не означает, что у вас расстройство сна. Это просто руководство по повышению осведомленности.

ПОЛУЧИТЕ ОЦЕНКУ СНА +

ПОЛУЧИТЕ ОЦЕНКУ СНА +

НАИБОЛЕЕ РАСПРОСТРАНЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

Наша лаборатория предоставляет комплексные междисциплинарные услуги по изучению сна. В рамках регулярного осмотра, для постановки диагноза или, возможно, для установления эталона, ваш врач может запросить один или несколько лабораторных анализов.

Вот список наиболее часто заказываемых тестов, от исследований сна до ЭЭГ. Мы здесь, чтобы помочь ответить на любые вопросы.

ПЕРЕЧЕНЬ ИСПЫТАНИЙ